刘峰课题组合作研究绘制造血干细胞扩增组织的3D转录组图谱

来源：BioArt

血液系统中贮藏着一种具有自我更新、分化成各种血细胞潜能的成体干细胞，称为造血干细胞，它能够维持机体长久造血和组织稳态【1】。造血干细胞移植是恶性血癌的有效治疗手段，但干细胞来源不足成为限制该治疗广泛应用的瓶颈。因此，造血干细胞的发育，尤其是造血干细胞扩增的研究备受关注。然而，现在的研究主要集中在特定细胞群体或关键因子的“线性化”或“平面化”解析，缺乏全面“立体化”的分析。从系统生物学角度解析扩增性造血器官，将为造血干细胞扩增的机制研究提供更多的启示 （综述推荐| 多维单细胞技术解析器官发育与维持）【2】。

2019年4月30日，中国科学院动物研究所刘峰研究员课题组和中国科学院上海生科院计算生物学研究所韩敬东研究员课题组合作在Cell Reports杂志在线发表了题为：A 3D atlas of hematopoietic stem and progenitor cell expansion by multi-dimensional RNA-seq analysis的研究论文。鉴于造血发育过程的高度保守性 【3】，该论文以斑马鱼尾部造血组织 【4，5】（在功能上类似于哺乳动物的胎肝，为造血干细胞扩增及分化提供了特定的微环境）为研究对象，利用多重转录组测序的方法，绘制了扩增性造血器官的3D转录组图谱，阐释了造血干细胞和微环境细胞之间的分子调控网络。

首先，为了系统性地研究斑马鱼尾部造血组织如何支持造血干细胞扩增、分化的机制，刘峰课题组利用三种转录组测序方法，特定类型群体细胞转录组、空间转录组【6】和单细胞转录组，并联合韩敬东课题组详细解析了斑马鱼尾部造血组织的时空特性。不同发育时期特定细胞群体的转录组测序分析表明，造血干细胞与相应微环境细胞具有协同发育和共享基因表达的特点。空间转录组测序反映细胞位置信息，揭示了多种微环境因素对造血干细胞的不同调控方式，并实现了三维转录组重构斑马鱼造血器官。单细胞转录组数据更精细阐释尾部造血组织细胞类群、细胞特征及细胞间分子调控，并发现造血干祖细胞分化和细胞周期存在一定的关联性。多重转录组测序综合分析揭示了造血干细胞在尾部造血组织的扩增受到内源性和外源性信号的共同调控，鉴定了新的造血干细胞的标记基因，发现了影响造血干细胞扩增的信号通路，完善了造血干细胞-微环境细胞间分子调控网络。例如，染色质结构维持蛋白smchd1，通过调节造血干细胞增殖促进其扩增；微环境细胞来源的Integrin 信号通路负向调控造血干细胞扩增。

图1：多重转录组测序解析斑马鱼造血器官。多重转录组测序，包括：特定类型群体细胞转录组测序、空间转录组测序和单细胞转录组测序，揭示斑马鱼尾部造血组织的时空特性。

同时此项工作还构建了斑马鱼尾部造血组织多重转录组数据库http://www.picb.ac.cn/hanlab/ichtatlas/Home，可以检索任何基因在造血组织的表达谱，包括基因表达的时间、细胞类型及相对空间位置。

该工作不仅发现了造血干细胞特征基因、细胞状态与细胞分化的关系，阐释了微环境和造血干细胞互作的调控网络，更为血液系统研究提供了丰富的数据资源；同时，也将为造血干细胞的体外扩增提供理论指导。

图2：斑马鱼造血器官转录组数据库。

中科院动物研究所博士研究生薛媛媛和中科院上海生科院计算生物学研究所博士研究生刘登辉为文章共同第一作者，刘峰研究员和韩敬东研究员为文章共同通讯作者。中国科学院生物化学与细胞生物学研究所景乃禾研究员与中国科学院广州生物医药与健康研究院彭广敦研究员在空间转录组测序方面提供了大力支持。

原文链接：

https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.04.030

制版人：珂

参考文献

1. Haas, S., Trumpp, A. & Milsom, M. D. Causes and Consequences of Hematopoietic Stem Cell Heterogeneity. Cell stem cell 22, 627-638, doi:10.1016/j.stem.2018.04.003 (2018).

2. Zhang, Y. & Liu, F. Multidimensional Single-Cell Analyses in Organ Development and Maintenance. Trends in cell biology, doi:10.1016/j.tcb.2019.02.006 (2019).

3. Rowe, R. G., Mandelbaum, J., Zon, L. I. & Daley, G. Q. Engineering Hematopoietic Stem Cells: Lessons from Development. Cell stem cell 18, 707-720, doi:10.1016/j.stem.2016.05.016 (2016).

4. Xue, Y. et al. The Vascular Niche Regulates Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Lodgment and Expansion via klf6a-ccl25b. Developmental cell 42, 349-362 e344, doi:10.1016/j.devcel.2017.07.012 (2017).

5. Tamplin, O. J. et al. Hematopoietic stem cell arrival triggers dynamic remodeling of the perivascular niche. Cell 160, 241-252, doi:10.1016/j.cell.2014.12.032 (2015).

6. Chen, J. et al. Spatial transcriptomic analysis of cryosectioned tissue samples with Geo-seq. Nature protocols 12, 566-580, doi:10.1038/nprot.2017.003 (2017).